WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!


Pages:     || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 39 |

Г.ЛАЗОРТ, А.ГУАЗЕ, Р.ДЖИНДЖИАН

ВАСКУЛЯРИЗАЦИЯ

И ГЕМОДИНАМИКА

СПИННОГО МОЗГА

АНАТОМИЯФИЗИОЛОГИЯ

ПАТАЛОГИЯАНГИОГРАФИЯ

ЧАСТЬ ПЕРВАЯ

ВАСКУЛЯРИЗАЦИЯ СПИННОГО МОЗГА

В первой части сделана попытка собрать все имеющиеся в настоящее время данные

описательной и функциональной анатомии сосудистой си­стемы спинного мозга.

Прежде всего будут изложены методы исследова­ния, способствовавшие развитию представлений об особенностях васкуляризации спинного мозга, затем эмбриогенез и сравнительная анатомия сосудов спинного мозга. Четвертая глава — артериальное кровоснабжение спинного мозга — имеет наибольшее значение в практике; в нее вклю­чены данные о кровоснабжении твердой мозговой оболочки спинного моз­га и позвоночника. Это объединение целесообразно с нашей точки зрения в связи с тем, что его источники имеют единое происхождение и связаны многочисленными анастомозами с артериями спинного мозга. Две пос­ледние главы посвящены капиллярной сети и венам спинного мозга и позвоночника.

ГЛАВА I МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Исследование поверхностной и внутримозговой артериальных систем у человека и животных связано с большими трудностями, обусловленными непостоянством отхождения магистральных стволов, их вариабельностью и наличием на всех уровнях интенсивно развитой сети анастомозов. Выделе­ние спинного мозга сложно вследствие значительной его протяженности, легко возникающих повреждений, многообразия вариантов отхождения и малого диаметра спинальных артерий. Метод простой препаровки оказы­вается недостаточным, так как при этом нарушается целостность внутримозговой артериальной сети и неизбежно появляются артефакты.

Наилуч­шим следует считать усовершенствованный классический метод наливки артерий, при котором используются предварительно окрашенные, жидкие в момент инъекции, а затем затвердевающие или желатинизирующиеся ве­щества. Они остаются в артериях после выделения спинного мозга, что значительно облегчает препаровку. С большим успехом применяются рентгеноконтрастные вещества.

1 Написана в сотрудничестве с М. Pinsonneau, руководителем отдела анатомии в Туре.

А. ВЕЩЕСТВА ДЛЯ НАЛИВКИ Среди большого количества подобных веществ не существует какоголибо одного поистине совершенного; в практике используются следующие группы.

Окрашенные наливочные массы. Самым большим их недостатком является то, что они вытекают из сосудов во время препаровки. Кроме того, после наливки они легко и быстро диффундируют в окружающее ве­ щество мозга, что затрудняет фиксацию и длительное хранение препаратов.

К этим веществам относятся: тушь, водный раствор которой впервые при­ менил A. Adamkiewicz (1882), а в растворе формалина ее использовали Th. Sun и L. Alexander (1939); берлинскую лазурь и кармин в спиртовом или в масляном растворе применяли Н. Kadyi (1889), L. Testut и О. Jacob (1911); бензидин — A. Y. Herren, L. Alexander (1939); Th. Suh и L. Ale­ xander (1939).

Рентгеноконтрастные вещества (водорастворимые контрастные ве­ щества и йодистые масла, используемые в клинической ангиографии) обла­ дают теми же недостатками, которые свойственны предыдущей группе.

3. Окрашенные наливочные массы, затвердевающие после введения. J. L. Corbin (1961) использовал для наливки внутримозговых артерий же­латин, окрашенный тушью. По его мнению, желатин по сравнению с кол­лоидным барием легче проникает в мелкие артерии и в меньшей степени диффундирует через сосудистую стенку, Применялась смесь туши и 10% раствора желатина в пропорции 1:1, нагретая до 30°. G. Lazorthes и соавт. (1957—1958), а затем J. L. Corbin (1961) заполняли сосуды винило­выми смолами (15% раствор rhodopas A. X. в ацетоне), которые можно использовать только для крупных и средних артерий, так как они облада­ют большой вязкостью. К. Jellingeir (1965) применил раствор цветного латекса, не подвергающегося ретракции при затвердении, что позволяет измерять диаметр артерий.



4. Окрашенные рентгеноконтрастные вещества. Водный раствор кол­лоидного сульфата бария, состоящий из 20% бария, 10% формалина и 70% воды, нельзя считать идеальной массой для наливки, однако по срав­нению с другими наливочными массами он имеет значительные преиму­щества: заполняет очень мелкие сосуды (частицы вещества размером от 0,1 до 0,3 см хорошо растворимы в воде), легко окрашивается в жидком состоянии, например в красный цвет, затвердевает при охлаждении, не диффундирует в нервную ткань и не разрушает ее. Этот метод был раз­работан G. Lazorthes, J. Poulhes с соавт. (1957—1958) и сразу нашел ши­рокое применение; наиболее значительные результаты получил с помощью этого метода G. Salamon.

Б. МЕТОДЫ НАЛИВКИ Можно применять различные методы. Раздельная наливка корешковоспинальной артерии позволяет примерно установить бассейн этой ар­терии.

Наливка определенной сосудистой зоны при введении вещества в одну из ветвей экстракорешкового артериального ствола в месте его начала дает возможность выявить поверхностную артериальную систему и главным образом анастомозы магистральных стволов (первый анастомотический уровень). Нам удалось, например, методом наливки барием выявить на трупе все коллатерали между подключичной и сонной артериями и иссле­довать систему анастомозов позвоночных артерий (G. Lazorthes, A. Gouaze, 1968).

J. L. Corbin (1961) успешно использовал этот метод, применяя раство­ры тушьжелатин или тушьвиниловые смолы. Ему удалось заполнить внугримозговые артерии при введении раствора в артерию поясничного утол­щения, грудные корешковые артерии, артерии корешков gs—Се, вертебральнобазилярный бассейн.

R. Hudart, R. Djindjian, H. Julian и М. Hurth (1965) впервые осуществили избирательную наливку межреберных ар­терий.

Тотальная наливка всей артериальной системы трупа путем введения одного из растворов в бедренную артерию представляет наибольший инте­рес. Этот метод имеет большие преимущества, обеспечивая одинаковое и постоянное внутрисосудистое давление, дает возможность заполнить всю артериальную систему без разрывов и перехода вводимого вещества в вены. Именно этот метод был использован J. Lazorthes и соавт. (1957, 1958), которые применили для наливки цветной раствор коллоидного ба­рия. После ламинэктомии спинной мозг и ствол выделяются на всем про­тяжении, затем производится рентгеновский снимок в целом, а далее — серия рентгенограмм срезов мозга толщиной 0,5 см, проведенных на опре­деленных уровнях. J. L. Corbin (1961) исследовал этим методом только экстрамедуллярные отделы артериальной системы спинного мозга, вводя контрастную массу в аорту под постоянным давлением (1,5—2 кг/см2) в течение 15—20 мин.

Выделенный мозг фиксировался в формалине 8 дней.

В. ИССЛЕДОВАНИЕ ПРЕПАРАТОВ Для исследования предварительно налитых участков мозга исполь­зуются различные методы.

Препаровка.

Тотальная рентгенография блоков или срезов мозговой ткани (при не­обходимости — микрорентгенография). Недостатком этого метода являет­ся то, что нельзя исследовать глубоко расположенные участки препарата и получать изображение в одной и той же плоскости.

Коррозия кислотой или щелочью кусочка мозга, артерии которого бы­ли заполнены виниловыми смолами или латексом. Этот метод оставляет только сосудистый слепок, связь сосудов с окружающими образованиями полностью разрушается и оценка функционального состояния кровотока той или иной области затрудняется.

Просветление блоков или срезов мозга, сосуды которых были предва­рительно налиты латексом или коллоидным барием. Все используемые в настоящее время методы просветления являются модификациями класси­ческого метода Шпальтегольца.

Они очень хорошо выявляют внутримозговое разветвление сосудистой сети, хотя отличаются трудоемкостью и продолжительностью. Метод просветления, который был разработан нами вместе с J. Ponlhes и Е. Galy в лаборатории анатомии в Тулузе, состоит из нескольких этапов. После перевязки основных сосудов выбирают участок для исследования и фиксируют в 10% растворе формалина в течение 8 дней. При необходимости производят предварительную рентгенографию. Срезы отбеливают в десятикратном объеме перекиси водорода, промывают 24 ч в проточной воде, а затем в дистиллированной воде в течение суток.





Перекись водорода следует менять часто, особенно на первых этапах отбе­ливания, длительность которых зависит от блока и толщины срезов.

Второй этап заключается в обычном обезвоживании в спиртах восхо­дящей крепости:

кусочки мозга погружают последовательно в 50°, 70°, 85°, 95° и абсолютный спирт на 24 ч в каждый. Перед каждой сменой спирта кусочек тщательно просушивают фильтровальной бумагой.

Далее срезы просветляют в ксилоле; продолжительность пребывания кусочка в растворе до получения хорошей прозрачности варьирует от 72 до 96 ч; ксилол в сосуде должен меняться каждые 24 ч. Затем срез поме­щают в сосуд с полиэфирной смолой без катализатора. Эту процедуру сле­дует проводить в вакууме во избежание образования в ткани пузырьков воздуха и для создания благоприятных условий равномерному пропиты­ванию вещества мозга смолой.

Просветленные таким образом срезы можно исследовать и фотографи­ровать непосредственно в сосуде с жидкими смолами или после заливки в них.

Преимущество этого метода просветления заключается в том, что изго­товленный таким образом препарат можно исследовать под бинокулярной лупой или под микроскопом, изучая соотношения сосудов с окружающими структурами и ход артерий как на поверхности, так и в глубине сосудисто­го бассейна определенной области.

Недостатком метода является потеря деталей среза при фотографировании.

Г. ПРИЖИЗНЕННОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ АРТЕРИЙ СПИННОГО МОЗГА ЖИВОТНЫХ Техника посмертной наливки сосудов спинного мозга человека и экс­периментальных животных идентична. Прижизненное исследование спинальных артерий в эксперименте требует особых методов.

Один из нас (J. J. Santini et coll., 1964) использовал введение бария при подключении искусственного сердца после кровопускания. Животным под общим наркозом после гепаршшзации и артериального кровопускания капельно вводили мелкодисперсный барий.

Введение контраста продолжалось до появления картины заполнения артериальной сети и начала перехода вещества в вены. Артефакты могут возникать при повышении давления, под которым вводят барий. Спинной мозг выделяется после охлаждения животного, что предохраняет спинной мозг от повреждений при препаровке.

Внутримозговые артерии изучают па рентгенограммах, а затем на горизонтальных и сагиттальных срезах, про­веденных через весь спинной мозг. Этот метод позволяет изучать самые мелкие сосуды.

Другим, достаточно широко используемым методом является марки­ровка сосудистых функциональных территорий спинного мозга флюорес­центными нейротропными маркерами (биологическая флюоресценция). Метод был разработан A. Gouaze и соавт. (1964). Маркер (производное флюоресцентного курамииа) вводят животному под анестезией при помо­щи очень тонкой иглы в одну из артерий спинного мозга (например, пояс­ничную), при этом сохраняются физиологические гемодинамические вза­имоотношения. Маркер фиксируется в нервной ткани в момент своего пер­вого прохождения в пределах бассейна исследуемой артерии. Животное забивают перед вторым прохождением маркера, которое сопровождается *го фиксацией уже на всем протяжении спинного мозга; и таким образом стираются границы зоны кровоснабжения исследуемой артерии. Выделен­ный спинной мозг исследуют и фотографируют в ультрафиолетовом свете, который вызывает яркое синее свечение маркера. Флюоресцирующие мар­керы очень устойчивы, и залитые в смолы блоки хорошо сохраняются. Этот метод, естественно, не дает возможности изучать морфологию артерий, но четко выявляет физиологические бассейны, а также возможности перетока из исследуемой артерии при перевязке соседних сшшальных артерий (феломен экспансии флюоресцирующей территории).

Pages:     || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 39 |










© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.